1.TRIzol®或类似产品中的组织或细胞裂解比例：
- 组织：每100毫克组织使用1毫升TRIzol。
- 培养细胞：每1 X 107细胞使用1毫升TRIzol。
2.室温下静置5分钟，以促进核糖体蛋白复合物解离。
3.每使用1毫升TRIzol®裂解试剂，添加0.2毫升氯仿/异戊醇（49:1）。用手使劲摇晃10秒。
4.冰上孵出样品2-3分钟，在4°C下离心15分钟，将RNA从组织/细胞裂解液中分离出来。
5.使用移液器将顶部的水相转移到新的无RNA酶管中。
6.沉淀样品：可以在此步骤中使用异丙醇或氯化锂。
异丙醇：在提取的水层中添加1mL异丙醇。在-20°C孵育1小时。
氯化锂：氯化锂选择性沉淀RNA而不是DNA或蛋白质。加入正确量的7.5MLiCl溶液，使提取水层中的LiCl浓度达到2.5M。在-20°C孵育1小时。
如果RNA产量很小，可以加入使用无RNA酶的糖原作为载体，以促进RNA沉淀。
7.在4°C，10,000xg，离心20分钟，丢弃上层。管底应该有一个凝胶状的白色颗粒，为总RNA。
8.将颗粒悬浮在0.5-1毫升的75%乙醇和漩涡中几秒钟来清洗RNA。在4°C下离心5分钟，10,000xg，并去除上清液。
9.在不干扰RNA颗粒的情况下，尽可能多地去除乙醇洗剂。空气干燥5-10分钟。注意：在溶解之前，不要让颗粒太干燥很重要，这会影响RNA的溶解度。
10.在无RNA酶水或TE中悬浮RNA颗粒。使用分光光度计（如纳米滴管）、琼脂糖凝胶或生物分析仪定量和评估RNA样本的质量。
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